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Tubos pre-llenados de 2,0 mL con bolas de rodamiento y Búfer de Molienda — paso 1 en el sistema ProAmpRT™ que entrega resultados de vigilancia de WNV, Dengue y Zika en menos de 30 minutos.
Validación Independiente
Burkhalter et al., J Med Entomol 2018 (PMID: 29462341)
Tres pasos reemplazan la espera de 1 a 5 días en el laboratorio estatal. PLM-2008 es el punto de partida.
Agregue hasta 50 mosquitos a un tubo PLM-2008 pre-llenado. Molienda con bolas a 35 seg a 4.000 rpm × 2. Centrifugue 5–10 min a 12.000 × g. Transfiera 200 µL del sobrenadante clarificado a extracción.
Elija su rendimiento: PLM-2007 (Mag Pro Plus, automatizado en Mag Pro-32), PLM-2004 (Pure Pro-Spin, columna de giro de sílice), o PLM-2000 (Pro-Mag, bola magnética manual).
PLM-1008 (WNV) u otros kits ProAmpRT LAMP — amplificación de 30 minutos a 66 °C en el lector isotérmico Optigene Genie II/III. Resultado de vigilancia el mismo día.
Cada tubo de 2,0 mL se envía pre-llenado con una bola de rodamiento y Búfer de Molienda. Sin pesaje, sin pipeteo, sin paso de preparación entre técnicos.
100 preparaciones de homogeneización — suficientes para una temporada completa de vigilancia para la mayoría de laboratorios de MAD y control de vectores pequeños a medianos.
PLM-2008 → extracción de RNA → detección LAMP en menos de 30 minutos (según fabricante). Reemplaza TAT de laboratorio estatal de 1–5 días.
En una evaluación publicada en tarjetas de miel, ProAmpRT LAMP detectó muestras de WNV/ZIKV que RAMP reportó como negativas (Burkhalter et al., 2018; PMID: 29462341).
La mayoría de distritos envían pools al laboratorio estatal y espera —a veces 3–5 días, con límites de volumen semanal. ProAmpRT entrega resultados de vigilancia de WNV, Dengue y Zika en menos de 30 minutos, sin límite de envíos y sin cola en laboratorio estatal. PLM-2008 es el primer paso — tubos pre-llenos para pools de hasta 50 mosquitos.
El buffer de molienda casero es consistente hasta que no lo es. PLM-2008 se envía pre-lleno con la misma bola de rodamiento y Buffer de Molienda en cada tubo — fabricado bajo control de lote. Bead-beat 35 seg a 4.000 rpm × 2, centrifuga, transfiere 200 µL. Mismo resultado en cada corrida, independientemente de quién esté en el banco.
ProAmpRT LAMP ha sido evaluado independientemente y publicado en el Journal of Medical Entomology (Burkhalter et al., 2018; PMID: 29462341). PLM-2008 proporciona reactivos de homogenización controlados por lote y documentados en IFU — un registro trazable desde la recolección hasta el resultado de vigilancia. (Solo para Uso en Investigación — no para diagnóstico clínico de pacientes.)
PLM-2008 es el paso 1. Combínalo con extracción de RNA y detección LAMP aguas abajo del mismo fabricante.
Placas de extracción pre-cargadas diseñadas para el instrumento Mag Pro-32 — 32 muestras por corrida, 15–40 minutos.
Detección de Virus de West Nile basada en LAMP. Amplificación de 30 min a 66 °C en Optigene Genie II/III; pico de anidamiento de WNV 86,4–88,4 °C.
Extracción automatizada de 32 muestras con perlas magnéticas y descontaminación UV integrada. Protocolo de operación automática.
Extracción de ARN con columna de silica y centrifugación con protocolo publicado para mosquitos. 50 reacciones por kit. Flujo de trabajo manual — no requiere instrumento.
Extracción de ARN con bolas magnéticas manuales con soporte magnético de mano. Rendimiento flexible; se empareja con PLM-2008 homogenado.
Lector LAMP isotérmico con análisis de amplificación y recocido. Instrumento requerido para el paso de detección LAMP PLM-1008.
| Especificación | Valor |
|---|---|
| Número de Catálogo | PLM-2008 |
| Tipo de Producto | Consumible de homogenización de piscina de mosquitos pre-relleno |
| Designación RUO | Solo para Investigación — No para Uso en Procedimientos de Diagnóstico |
| Contenido | Tubos de 2,0 mL pre-rellenos con bolas de soporte (BB) y Buffer de Molienda |
| Preparaciones por Kit | 100 |
| Tamaño Máximo de Piscina | 50 mosquitos por piscina |
| Tipo de Espécimen | Piscinas de cuerpo completo de mosquitos (mantenidas congeladas antes del procesamiento) |
| Paso de Homogenización | Mezclador de bolas o homogenizador rotor-estator; 35 seg a 4.000 rpm × 2 |
| Clarificación | Centrifugar 5–10 min a 12.000 × g (temperatura ambiente) |
| Volumen de Transferencia | 200 µL de sobrenadante clarificado a extracción de ARN |
| Almacenamiento | Temperatura ambiente; Buffer de Molienda 2–8°C; no congelar |
| Vida Útil | Al menos 12 meses en almacenamiento correcto |
| Espacio de Trabajo | Se recomienda Cabina de Bioseguridad Clase II |
| Extracción de ARN Compatible | PLM-2007 (automatizado), PLM-2004 (columna de centrifugación), PLM-2000 (imán manual) |
| Detección LAMP Compatible | PLM-1008 (WNV), PLM-1005 (DENV 1–4), kits ProAmpRT adicionales para ZIKV/CHIKV/EEE/WEE/SLE/LAC |
| Lector de Detección | Optigene Genie II / Genie III |
| Fabricante | Pro-Lab Diagnostics |
Especificaciones obtenidas de PLM-2004 IFU (Ver: 20180706) protocolo de mosquitos y PLM-1008 IFU (Ver: 160601). Contacte a Pro-Lab Direct para obtener PLM-2008 IFU independiente y SDS.
Cotización para su distrito o programa dentro de 1 día hábil.
Demostración de 20 minutos del sistema ProAmpRT — virtual o presencial.
Reabastecer PLM-2008 y consumibles posteriores de ProAmpRT.
Soporte de aplicaciones de control de vectores · (512) 832-9145
Para Uso en Investigación Únicamente — No para Usar en Procedimientos de Diagnóstico. El Kit de Recolección y Homogenización de Mosquitos (PLM-2008) y el flujo de trabajo completo de ProAmpRT™ se designan como Uso en Investigación Únicamente (RUO) según las designaciones regulatorias aplicables del fabricante. El IFU del kit de detección LAMP PLM-1008 especifica «No para Uso Clínico»; los IFU de extracción de ARN PLM-2004 y PLM-2000 establecen que los productos «no están destinados al diagnóstico, prevención o tratamiento de enfermedades». El sistema está destinado a la vigilancia de control de vectores y salud pública — no para diagnóstico clínico del paciente. El tiempo de flujo de trabajo «bajo 30 minutos» es declarado por el fabricante para el sistema ProAmpRT completo. El estudio de Burkhalter et al. (J Med Entomol. 2018; PMID: 29462341) evaluó especímenes en tarjetas de miel, no homogenato de grupos de mosquitos; el rendimiento en grupos de mosquitos puede variar.
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